In print como método não invasivo de coleta de amostra para o diagnóstico molecular da leishmaniose cutânea em população militar da Colômbia
Resumo
Considerando que os métodos tradicionais de coleta de amostra e diagnóstico para a leishmaniose cutânea apresentam limitações, como exame direto de esfregaços, cuja sensibilidade depende da perícia do profissional, o raspado de lesão que pode ser usado para a detecção de parasitas em lâmina, seu dna ou para culturas é demorado e exigente, e a biopsia da lesão que é invasiva e dolorosa, comparou-se com o método in print em papel filtro da lesão ulcerativa contra o método tradicional de aspirado mediante a técnica de pcr convencional utilizando como alvo uma região do dna do cinetoplasto do parasita. No presente trabalho, a pcr obteve uma sensibilidade para in print de 90,07% comparado com o aspirado, 86,3%, que, além disso, por ser um método de coleta de amostra não invasivo, com poucas exigências para o transporte, pode ser coletado diretamente na área de operações a muito baixo custo, resulta ser benéfico para ser usado nos pacientes com leishmaniose cutânea do Exército Nacional da Colômbia, que se encontram nas diferentes áreas de operações.
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Referências
www.who.int/mediacentre/factsheets/fs375/en/ [En línea]. - febrero de 2015. - 07 de marzo de 2016.
TDR_standar for cutaneous leishmaniasis clinical trials published.htlm [En línea] //http://www.who.int/tdr/news/2013 leishmaniasis_clinical_trials/en/. - 2013. - 07 de marzo de 2016.
Reithinger R & Dujardin JC. Molecular Diagnosis of Leishmaniasis: Current Status and Future Applications. J Clin Microbiol [internet] (2007) 45(1): p.21-25. Disponible en: PubMed doi: 10.1128/JMC.02029-06 (PMCID:PMC1828971).
https://doi.org/10.1128/JCM.02029-06
Magill AJ. Cutaneous leishmaniasis in the returning traveler. Infect Dis Clin North Am [internet] (2005). 19(1): 241-66 doi:.10.1016/j.idc.2004.11.005.
https://doi.org/10.1016/j.idc.2004.11.005
Boggild AK, Miranda-Verastegui C, Espinosa D, Arevalo J, Adaui V, Tulliano G, Llanos-cuentas A & Low DE. Evaluation of a Microculture Method for isolation of Leishmania Parsites from Cutaneous Lesions of patients in Peru . J clin Microbiol, 2007
https://doi.org/10.1128/JCM.01286-07
(11): 3680-3684. Published online 2007 sep 19. doi: 10.1128/JCM.01286-07 PMCID: PMC2168488.
https://doi.org/10.1128/JCM.01286-07
Boggild AK, Ramos A, P & Arevalo J. Diagnostic Performance of filter Paper Lesion Impression PCR for Secondarily Infected Ulcers and Nonulcerative Lesions Caused by Cutaneous Leishmaniasis. JClinMicrobiol [internet] 2011. 49(3):1097-1100.doi:10.1128/JCM. 02457-10 [PMCID:PMC 3067679].
https://doi.org/10.1128/JCM.02457-10
Faber WR, Oskam L, Van Gool T, Kroon NC, Knegt-Junk KJ, Hofwegen H, Van der wal AC, Kager PA Value of diagnostic techniques for cutaneous leishmaniasis. J.Am. Acad.Dermatol [internet] 2003. 49.p. 70-74. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/12833011.
https://doi.org/10.1067/mjd.2003.492
Craine N, Parry J, JO'Toole, D'Arcy S, Lyons M, Improving blood-borne viral diagnosis. clinical audit of the up take of dried blood spot testing offered by a substance misure service. J Viral Hepat [internet] 2009. 16: 219-222. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/19175879.
https://doi.org/10.1111/j.1365-2893.2008.01061.x
Wheat PF. History and development of antimicrobial susceptibility testing methodology. J. Antimicrob Chemotherapy. [ internet] 2001. 48( suppl 1): p. 1-4. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/11420332.
https://doi.org/10.1093/jac/48.suppl_1.1
Desbois D, Roque-Afonso AM, Lebraud P, Dussaix E. Use of dried serum spots for serogical and molecular detection of hepatitis A virus J Clin Microbiol [internet] , 2009. 47(5): p.1536-1542.https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/19321728
https://doi.org/10.1128/JCM.02191-08
Ayele W, Schuurman R, Messele, T, Dorigo-Zetsma W, Mengistu Y, Goudsmit J, Paxton WA, de Baar MP, Pollakis G. Use of dried spots of whole blood, plasma, and mother's milk collected on filter paper for measurement of human immunodeficiency virus type 1 burden. J Clin Microbiol [internet] 2007. 45: p. 891-896.Disponible en https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/17251400.
https://doi.org/10.1128/JCM.01919-06
Brambilla D, Jennings C, Aldrovandi G, Bremer J, Comeau AM, Cassol SA, Dickover R, Jackson JB, Pitt J, Sullivan J. L, Butcher A, Grosso L, Reichelderfer P, Ficus S A. Multicenter evaluation of use of dried blood and plasma spots specimens in quantitative assays for human immunodeficiency virus RNA: measurement, precision, and RNA stability. J Clin Microbiol [internet] 2003. 41: p.1888-1893.Disponible en: jcm.asm.org/content/47/4/1107.full
https://doi.org/10.1128/JCM.41.5.1888-1893.2003
Martinez AW, Phillips ST, Whitsides GM, Carrilho E. Diagnostic for the developing world: microfluidic paper-based analytical devices. Analchem [internet] 2010. 82: p. 3-10.Disponible en: pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/ac9013989.
https://doi.org/10.1021/ac9013989
Smit PW, Ivo E, Peeling RW, Mabey D, & Newton P N. Review Article: An overview of the clinical use of filter paper in the Diagnosis of tropical diseases. Am. J. Trop. Med. Hyg [internet] 2014. 90(2): p. 195-210 Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24366501
https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0463
Boggild A K, Valencia B M, Espinosa D, Veland N, Ramos A P, Arevalo J, Llanos-cuentas A, Low, D E. Detection and species identification of Leishmania DNA from filter paper lesion impressions for patients with American cutaneous leishmaniasis. Clin Infect Dis [internet] 2010.50(1): p. E1-6. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed doi: 10.1086/648730.
https://doi.org/10.1086/648730
Degrave, W, Fernandes O, Cambell D, Bozza M, Lopez, U. Use of molecular probes and PCR for detection and Typing of Leishmania-a mini-Review. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de janeiro,[internet] 1994. 89(3): p.463-469.Disponible en: www.scielo.br/pdf/mioc/v89n3/vol89(f3)_159-165_100.pdf
https://doi.org/10.1590/S0074-02761994000300032
Michalsky E M, Fortes-Dias CL, Pimenta P F, Secundino NF, Dias ES. Assessment of PCR in the detection of Leishmania spp in experimentally infected individual phlebotomine sandflies (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae) Rev Med Inst Trop [internet] 2002 44(5): p. 255-9.Disponible en : www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S00036- 46652002000500004.
https://doi.org/10.1590/S0036-46652002000500004
Jojoa Jojoa Sandra Jimena. Deteccion molecular de Leishmania spp en lesiones cutáneas del personal del Ejercito Nacional de Colombia expuesto en zonas endémicas. Maestria tesis,Universidad nacional de Colombia. [internet] 2012. [consultada el 6 de junio de 2016]. Disponible en: www.bdigital.Unal.edu.co/view/.../Jojoa_Jojoa_=3ASandra_Jimena=3A=3A,type.html
OMS http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/82766/1/WHO TRS 949 spa.pdf [En línea]. - abril de 2010. - [consultada 6 de mayo de 2016.
Marques MJ, Volpini AC, Genaro O, Mayirink W, Romanha AJ. Simple form of clinical sample preservation and Leishmania DNA extraction from human lesions for diagnosis of American cutaneous leishmaniasis via polymerase chain reaction. Am J Trop Med Hyg [internet] 2001.65: p.902-6.Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11791996.
https://doi.org/10.4269/ajtmh.2001.65.902
Fadime E, Soner U, & Ismail S K.. Comparison of Clinical Samples and Methods in Chronic Cutaneous Leishmaniasis. Am J trop Med Hyg [internet] 2014. 91(5): 895-900. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4228882/
https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0582
Benssoussan E, Nasereddin A, Jonas M, Schnur L. F, Jaffe CL, Comparison of PCR assays for diagnosis of cutaneous Leishmaniasis. (2006). J Clinic Microbiol [internet] 2006. 44: 1435-1439. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1448629/.
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